การย้อมสีพิเศษด้วยวิธี IPMA (Immunoperoxidase Monolayer Assay)

ความเป็นมา

การวินิจฉัยโรคติดเชื้อไวรัสในห้องปฏิบัติการสามารถทำได้หลายวิธี หนึ่งในวิธีที่มีความแม่นยำและใช้กันอย่างแพร่หลายในด้านไวรัสวิทยาคือ การย้อมสีพิเศษแบบ IPMA (Immunoperoxidase Monolayer Assay) ซึ่งจัดเป็นเทคนิค Immunocytochemistry ที่ผสานหลักการของปฏิกิริยาแอนติเจน–แอนติบอดีร่วมกับเอนไซม์เพอร์ออกซิเดส (Peroxidase enzyme) เพื่อแสดงตำแหน่งของไวรัสหรือโปรตีนไวรัสภายในเซลล์ที่เพาะเลี้ยงไว้ เทคนิคนี้ได้รับความนิยมเนื่องจากสามารถตรวจสอบการติดเชื้อไวรัสในระดับเซลล์ ได้อย่างแม่นยำ และไม่จำเป็นต้องใช้กล้องจุลทรรศน์ฟลูออเรสเซนต์เหมือนวิธี IFA (Immunofluorescence Assay)

ขั้นตอนการทำ

  1. การเพาะเลี้ยงเซลล์ (Cell Culture)

เริ่มต้นด้วยการเพาะเลี้ยงเซลล์ใน 96 well plate จนได้ monolayer

  1. การลงเชื้อไวรัส (Virus Infection)

เติมตัวอย่างไวรัสลงในหลุมเพาะเลี้ยง และบ่มเพื่อให้ไวรัสสามารถเข้าสู่เซลล์ได้ (ระยะเวลาขึ้นอยู่กับชนิดของไวรัส)

  1. การตรึงเซลล์ (Fixation)

ใช้สารฟอร์มัลดีไฮด์ (formaldehyde) หรือน้ำยาอื่น ๆ ในการตรึงเซลล์เพื่อคงสภาพโครงสร้างของเซลล์และแอนติเจนภายใน

  1. การลดการจับที่ไม่จำเพาะ (Blocking)

เติมสารบล็อก เช่น BSA (Bovine Serum Albumin) เพื่อป้องกันการจับของแอนติบอดีแบบไม่จำเพาะ

  1. การเติม Primary แอนติบอดี (Primary Antibody)

เติมแอนติบอดีชนิดจำเพาะต่อแอนติเจนของไวรัสเป้าหมาย

  1. การเติม Secondary แอนติบอดี (Secondary Antibody)

เติม Secondary แอนติบอดีที่จับกับ Primary แอนติบอดี ซึ่งมีเอนไซม์ peroxidase เกาะอยู่

  1. การแสดงผล (Color development):

เติมตัวทำปฏิกิริยากับเอนไซม์ peroxidase เช่น DAB (3,3′-diaminobenzidine) หรือ AEC เมื่อเกิดปฏิกิริยากับ peroxidase จะให้ผลเป็นสีน้ำตาลในตำแหน่งที่มีไวรัส

  1. การล้างและอ่านผล (Washing and Result Interpretation)

ล้างด้วย PBS เพื่อกำจัดสารส่วนเกินต่างๆ แล้วดูผลด้วยกล้องจุลทรรศน์ เพื่อหาจุดที่เกิดสีในเซลล์ที่ติดเชื้อ

ข้อดีของ IPMA

  1. ไม่จำเป็นต้องใช้กล้องฟลูออเรสเซนต์
  2. มีความไวและจำเพาะสูง
  3. สามารถแยกแยะตำแหน่งไวรัสภายในเซลล์ได้อย่างชัดเจน
  4. ใช้ในการวิเคราะห์เชิงปริมาณและเชิงคุณภาพได้

แหล่งอ้างอิง

  • OIE (World Organisation for Animal Health). (2019). Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals.
  • Haines, D. M., & Chelack, B. J. (1991). Technical considerations for developing enzyme immunohistochemical staining procedures on formalin-fixed paraffin-embedded tissues. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 3(1), 101–112.
  • พงศ์พิชญ์ ภู่เจริญ. (2563). เทคนิคการย้อมสี Immunohistochemistry และ คณะสัตวแพทยศาสตร์ มหาวิทยาลัยเกษตรศาสตร์.